CONFERENCES Dr. med.
CONFERENCES Dr. med. Martin Roskos martin.roskos@synlab.com Dr. rer. nat. Caroline Pfeifer carolinepfeifer@gmx.net Univ. Prof. Dr. med. Winfried März winfried.maerz@synlab.com variante handelt es sich um eine von der B.1.1.28 Linie abstammende SARS-CoV-2-Variante, die erstmals in Brasilien nachgewiesen wurde und für die eine reduzierte Wirksamkeit neutralisierender Antikörper bei Genesenen bzw. Geimpften angenommen wird. Zusätzlich vermutet man auch bei dieser Variante eine erhöhte Übertragbarkeit [34]. Seit dem 11.05.2021 wird von der WHO auch die Variante B.1.617 zu den VOC gezählt. B.1.617 wurde zuerst in Indien gefunden und verbreitet sich dort stark. Mittlerweile wurde sie auch in Großbritannien ebenso wie in Deutschland nachgewiesen [35]. Referenzen 1. WHO Statement regarding cluster of pneumonia cases in Wuhan, China. Verfügbar unter: https://www.who.int/ china/news/detail/09-01-2020-who-statement-regarding-cluster-of-pneumonia-cases-in-wuhan-china [Letzter Zugriff 29.03.2021]. 2. Huang C-G, Lee K, Hsiao M et al. Culture-based virus isolation to evaluate potential infectivity of clinical specimens tested for COVID-19. J Clin Microbiol 2020; 58: 1–8. 3. WHO. Laboratory testing for coronavirus disease 2019 (COVID-19) in suspected human cases. Verfügbar unter: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/ 10665/331329/WHO-COVID-19-laboratory-2020. 4-eng.pdf?sequence=1&isAllowed=y [Letzter Zugriff 29.03.2021]. 4. Wölfel R, Corman VM, Guggemos W et al. Virological assessment of hospitalized patients with COVID-2019. Nature 2020; 581: 465–9. 5. Wang X, Tan L, Wang X et al. Comparison of nasopharyngeal and oropharyngeal swabs for SARS-CoV-2 detection in 353 patients received tests with both specimens simultaneously. Int J Infect Dis 2020; 94:107–9. 6. Tu Y-P, Jennings R, Hart B et al. Swabs collected by patients or health care workers for SARS-CoV-2 testing. N Engl J Med 2020; 383: 494–6. 7. Chen JH-K, Yip CC-Y, Poon RW-S et al. Evaluating the use of posterior oropharyngeal saliva in a point-of-care assay for the detection of SARS-CoV-2. Emerg Microbes Infect 2020; 9: 1356–9. 8. Iwasaki S, Fujisawa S, Nakakubo S et al. Comparison of SARS-CoV-2 detection in nasopharyngeal swab and saliva. J Infect 2020; 81: e145–7. 9. Jamal AJ, Mozafarihashjin M et al. Sensitivity of nasopharyngeal swabs and saliva for the detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2. Clin Infect Dis 2020; 27: 1064–6. 36
VIRUSNACHWEIS 10. McCormick-Baw C, Morgan K, Gaffney D et al. Saliva as an alternate specimen source for detection of sarscov-2 in symptomatic patients using cepheid xpert xpress sars-cov-2. J Clin Microbiol 2020; 58: 2−3. 11. To KKW, Tsang OTY, Yip CCY et al. Consistent detection of 2019 novel coronavirus in saliva. Clin Infect Dis 2020; 71: 841–3. 12. Williams E, Bond K, Zhang B et al. Saliva as a noninvasive specimen for detection of sars-cov-2. J Clin Microbiol 2020; 58: 1–2. 13. Rao M, Rashid FA, Sabri FSAH et al. Comparing nasopharyngeal swab and early morning saliva for the identification of SARS-CoV-2. Clin Infect Dis 2020 Aug 6: ciaa 1156. Online ahead of print. 14. Wyllie AL, Fournier J, Casanovas-Massana A et al. Saliva or nasopharyngeal swab specimens for detection of SARS- CoV-2. N Engl J Med 2020; 383:1283–6. 15. Guo W-L, Jiang Q, Ye F et al. Effect of throat washings on detection of 2019 novel coronavirus. Clin Infect Dis 2020; 71:1980–1. 16. Malecki M, Lüsebrink J, Teves S, Wendel AF. Pharynx gargle samples are suitable for SARS-CoV-2 diagnostic and save personal protective equipment and swabs. Infect Control Hosp Epidemiol 2021; 42(2): 248–9. 17. Saito M, Adachi E, Yamayoshi S et al. Gargle lavage as a safe and sensitive alternative to swab samples to diagnose COVID- 19: a case report in Japan. Clin Infect Dis 2020; 71: 893–4. 18. Corman VM, Landt O, Kaiser M et al. Detection of 2019 novel coronavirus (2019-nCoV) by real-time RT-PCR. Euro Surveill 2020; 25(3): 2000045. 19. Kanji JN, Zelyas N, MacDonald C et al. False negative rate of COVID-19 PCR testing: a discordant testing analysis. Virol J 2021; 18: 1–6. 20. RKI. Verfügbar unter: https://www.rki.de/DE/Content/ InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Vorl_Testung_nCoV.html [letzer Zugriff 28.3.2021]. 21. He X, Lau EHY, Wu P et al. Temporal dynamics in viral shedding and transmissibility of COVID-19. Nat Med 2020; 26: 672–5. 22. Schildgen V, Demuth S, Lüsebrink J, Schildgen O. Limits and opportunities of SARS-CoV-2 antigen rapid tests: an experienced-based perspective. Pathog (Basel, Switzerland) 2021; 10: 1–7. 23. Kohmer N, Toptan T, Pallas C et al. The comparative clinical performance of four SARS-CoV-2 rapid antigen tests and their correlation to infectivity in vitro. J Clin Med 2021; 10(2): 328. 24. Prince-Guerra JL, Almendares O, Nolen LD et al. Evaluation of Abbott BinaxNOW Rapid Antigen Test for SARS-CoV-2 infection at two community-based testing sites – Pima County, Arizona, November 3–17, 2020. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2021; 70: 100–5. 25. Mak GC, Lau SS, Wong KK et al. Analytical sensitivity and clinical sensitivity of the three rapid antigen detection kits for detection of SARS-CoV-2 virus. J Clin Virol 2020; 133: 337–9. 26. Dinnes J, Deeks JJ, Adriano A, et al. (2020) Rapid, pointof-care antigen and molecular-based tests for diagnosis of SARS-CoV-2 infection. Cochrane database Syst Rev 8:CD013705. https://doi.org/10.1002/14651858.CD013705 27. Robert Koch Institut RKI − Coronavirus SARS-CoV-2 − Hinweise zur Testung von Patienten auf Infektion mit dem neuartigen Coronavirus SARS-CoV-2. https://www.rki.de/DE/Content/ InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Vorl_Testung_nCoV.html 28. Niko Kohmer, Holger F. Rabenau SC. Der richtige Nachweis. Dtsch Aerzteblatt Int 2020; 17: 866–71. 29. IMD Institut für Medizinische Diagnostik Berlin-Potsdam GbR Indikation und Interpretation der SARS-CoV-2-Antikörperdiagnostik. Verfügbar unter: https://www.imd-berlin. de/fachinformationen/diagnostikinformationen/indikationund-interpretation-der-sars-cov-2-antikoerperdiagnostik. html [Letzter Zugriff 25.03.2021]. 30. RKI. Verfügbar unter: https://www.rki.de/DE/Content/ InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/Projekte_RKI/SeBluCo_ Zwischenbericht [Letzter Zugriff 29.03.2021]. 31. Wiersinga WJ, Rhodes A, Cheng AC et al. Pathophysiology, transmission, diagnosis, and treatment of coronavirus disease 2019 (COVID-19): a review. JAMA 2020; 324: 782–93. 32. Zhao J, Yuan Q, Wang H et al. Antibody responses to SARS- CoV-2 in patients with novel coronavirus disease 2019. Clin Infect Dis 2020; 71: 2027–34. 33. Sun B, Feng Y, Mo X et al. Kinetics of SARS-CoV-2 specific IgM and IgG responses in COVID-19 patients. Emerg Microbes Infect 2020; 9: 940–8. 34. RKI. Übersicht und Empfehlungen zu besorgniserregenden SARS-CoV-2-Virusvarianten (VOC). Verfügbar unter: http:// www.rki.de/DE/Content/InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/ Virusvariante.html [Letzter Zugriff 31.05.21]. 35. RKI. Bericht zu Virusvarianten von SARS-CoV-2 in Deutschland (Stand: 26. Mai 2021). Verfügbar unter: www.rki.de/DE/ Content/InfAZ/N/Neuartiges_Coronavirus/DESH/Bericht_ VOC_2021-05-26.pdf?__blob=publicationFile [Letzter Zugriff 31.05.21]. Dr. med. Martin Roskos, CMO (Chief Medical Officer) SYNLAB Holding Deutschland GmbH MVZ Gera/SYNLAB Jena Oncoscreen Straße des Friedens 122, 07548 Gera Dr. rer. nat. Caroline Pfeifer Univ. Prof. Dr. med. Winfried März synlab Akademie, Synlab Holding Deutschland GmbH, P5 7, 68167 Mannheim CONFERENCES 37
